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貼壁、懸浮、原代細(xì)胞感染Protocol及常見問題解答
  • 發(fā)布日期:2018-05-14      瀏覽次數(shù):7558
    • 慢病毒是當(dāng)前zui熱門的基因操作工具,其感染譜廣,可有效地感染腫瘤細(xì)胞、神經(jīng)元細(xì)胞、心肌細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、干細(xì)胞等多種類型的細(xì)胞,從而為基因功能的研究提供了更強有力的工具。然而仍有一部分細(xì)胞,尤其是原代細(xì)胞和懸浮細(xì)胞由于細(xì)胞特性,很難獲得的感染效率。為了提高細(xì)胞的感染效率,我們常常選擇多加病毒或使用Polybrene等助感染試劑,然而細(xì)胞狀態(tài)卻變差了,且增加感染效率并沒有達(dá)到理解的效果,這是什么原因呢?
       
      一、對慢病毒感染出現(xiàn)的問題進(jìn)行原因分析

      1. 細(xì)胞狀態(tài)變差——細(xì)胞毒性 

       

      • 雜質(zhì)病毒溶液中殘留的雜質(zhì)蛋白、內(nèi)毒素及宿主細(xì)胞DNA等是造成細(xì)胞毒性的主要因素。特別對于某些外源刺激敏感的細(xì)胞來說,嚴(yán)重時將導(dǎo)致細(xì)胞死亡。這是病毒感染細(xì)胞后,狀態(tài)差異的主要原因。
      • 過度感染:外源基因過度表達(dá),會導(dǎo)致目的細(xì)胞本身正常新陳代謝失衡。這是有些細(xì)胞過感會死亡的主要原因。





      2. 病毒加了不少,效果不理想,如何增加感染效率——了解影響慢病毒感染效率的因素
       

      • 細(xì)胞膜的流動性
      • 細(xì)胞膜表面受體的表達(dá)豐度
      • 病毒與細(xì)胞的接觸面積和接觸幾率
      • 細(xì)胞膜與病毒外殼蛋白電荷的多少

       
      二、如何有針對性地增加慢病毒感染效率

      了解了影響細(xì)胞狀態(tài)和感染效率的原因后,我們就可以有針對性的進(jìn)行調(diào)整。
       
      1.  使用高滴度高純度的慢病毒,可以減少病毒中的雜質(zhì)對細(xì)胞狀態(tài)的影響:降低慢病毒對細(xì)胞的毒性
      2.  調(diào)整細(xì)胞狀態(tài),感染時使用對數(shù)期的細(xì)胞:增加細(xì)胞膜的流動性
      3.  降低感染時血清濃度,使用無血清/低血清的培養(yǎng)基:降低血清蛋白對病毒外殼蛋白的封閉
      4.  離心法,感染時將細(xì)胞培養(yǎng)板密封,用平角轉(zhuǎn)子離心機1000g離心1h,再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng):增加慢病毒與細(xì)胞的接觸幾率,但對細(xì)胞有一定的機械損傷,儀器要求高
      5.  感染時加入Rentronectin等纖粘蛋白:增加慢病毒與細(xì)胞接觸幾率,但會影響細(xì)胞的貼壁狀態(tài)
      6.  使用傳統(tǒng)的助感染試劑,如Polybrene:中和細(xì)胞膜和病毒粒子之間的電荷排斥,但Polybrene本身就具有細(xì)胞毒性,部分細(xì)胞對Polybrene敏感,容易導(dǎo)致細(xì)胞狀態(tài)變差、形態(tài)發(fā)生變化、甚至死亡。

      三、特殊細(xì)胞慢病毒感染注意事項

      1. 懸浮細(xì)胞
          對于懸浮細(xì)胞,可采用離心感染方法提高感染效率。如將細(xì)胞培養(yǎng)板密封后,用平角轉(zhuǎn)子離心機1000g離心1h,再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)。
       
      2. 極難感染的細(xì)胞
          對于極難感染的細(xì)胞,可采用多次感染的方法,即感染一次后,重新加入新鮮病毒再次感染,可顯著提升感染效率。但需要注意調(diào)整兩次感染間細(xì)胞狀態(tài)。
       
      3. 傳代能力較差的原代細(xì)胞、非分裂細(xì)胞

          原代細(xì)胞:由于細(xì)胞增長緩慢,可以在接種時提高匯合度到50%~60%,確保在感染后4天時細(xì)胞匯合度達(dá)到90%~100%;
          非分裂細(xì)胞:如神經(jīng)元細(xì)胞,接種后不再增殖,需要按照100%的匯合度進(jìn)行接種。 


       


      Q:慢病毒如何稀釋?
      A:用常規(guī)培養(yǎng)基、生理鹽水、Hanks液、PBS液等將慢病毒稀釋到需要的滴度。如原病毒標(biāo)記滴度為5 x 108 TU/ml,則取20 µl病毒液加入到80 µl的常規(guī)培養(yǎng)基中,即可得到1 x 108 TU/ml的病毒稀釋液。
       

      Q:如何確定向細(xì)胞中加入慢病毒的*時間?
      A:慢病毒感染細(xì)胞后需要4天的時間才能觀察到慢病毒攜帶的基因表達(dá),應(yīng)在細(xì)胞匯合度20~40%時且細(xì)胞狀態(tài)良好時加入慢病毒,確保在感染后4天時細(xì)胞增長達(dá)到90%~100%的匯合度。
       
      Q:加入慢病毒病毒后,細(xì)胞死亡很厲害,該如何處理?
      A:這種情況是由于慢病毒對該細(xì)胞有一定的毒性作用,需要調(diào)整并降低感染的MOI值,并且在感染后4小時、8 小時、12 小時對細(xì)胞進(jìn)行觀察,若發(fā)現(xiàn)細(xì)胞狀態(tài)變差時,則需要立刻對細(xì)胞進(jìn)行換液操作,使用新鮮的*培養(yǎng)液替換病毒感染培養(yǎng)液。
       
      Q:如何提高慢病毒對細(xì)胞的感染效率?
      A:慢病毒對細(xì)胞的感染效率受多個因素影響,如細(xì)胞自身生長的狀態(tài),細(xì)胞數(shù)量,細(xì)胞被慢病毒感染的難易程度等。因此保證細(xì)胞正常增殖,輪廓清晰,合適的細(xì)胞密度,選擇*的感染條件可以更好的保證感染效率。對于懸浮細(xì)胞,可采用離心感染方法,減少病毒感染時的體積,從而提高感染效率。如將細(xì)胞培養(yǎng)板密封后,用平角轉(zhuǎn)子離心機1000g離心1h,再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)。

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